ClearColi K12電轉感受態細胞

ClearColi K12電轉感受態細胞

產品規格CAT#: BFNC86053-01(5×50ul)/BFNC86053-02(20×50ul)

ClearColi K12 Electro  Cell                                       50μl/支

pUC19 (control vector，10pg/μl):                               10μl

恢復培養基                                                               50ml/瓶

保存條件(保質期)：                                        -80℃（6個月）

基因型

F^–λ^–?endA^–?recA^–frr181 msbA52 ?gutQ ?kdsD ?lpxL ?lpxM ?pagP ?lpxP ?eptA

產品說明

ClearColi K12電轉感受態細胞只能用于電擊轉化，不能用于熱激轉化。ClearColi K12菌株來源于K12 endA- recA-菌株。在K12 endA- recA-菌株中引入突變，導致ClearColi K12細胞壁外層的脂多糖（LPS）被修飾:LPS的低聚糖鏈被刪除，同時LPS的兩個?；溡脖粍h除，進而破壞了ClearColi K12大腸桿菌的內毒素信號通路，使得從該細胞中提取的蛋白或質粒DNA中的內毒素含量極低，提取的無內毒素質粒廣泛應用于后續的哺乳動物細胞轉化。ClearColi K12同時缺失核酸內切酶 (endA)和重組酶 (recA)，提高了質粒DNA的產量和質量。

青旗生物開發的ClearColi K12電轉感受態細胞經特殊工藝制作，pUC19質粒檢測轉化效率可達1×10⁷ cfu/μg DNA。

ClearColi K12電轉感受態細胞

操作方法

1. 0.1 cm 電擊杯和杯蓋從儲存液中拿出倒置于干凈的吸水紙上5分鐘，待其瀝干水分，正置5分鐘，待乙醇揮發干凈立即插入冰中，壓實冰面，電極杯頂離冰面0.5 cm以方便蓋上杯蓋，冰中靜置5分鐘充分降溫。

2. 取-80℃保存的ClearColi K12電擊感受態細胞插入冰中5 分鐘，待其融化，加入目的DNA ，并用手bo打EP管底輕輕混勻，避免產生氣泡，立即插入冰中。

   A. 測定轉化效率使用1 μl 10 pg/μl的對照質粒 pUC19；

   B. 對于未知來源或組分不明的質粒DNA，請用乙醇沉淀DNA后加入適量TE緩沖液 (10 mM Tris HCl, pH7.5; 1 mM              EDTA)重懸，DNA濃度不超過100 ng/μl，體積不超過5 μl/50 μl感受態。

3. 用200 μl槍頭(用刀切除0.5cm槍尖)將感受態-DNA混合物快速移到電擊杯中，避免產生氣泡，蓋上杯蓋。

4. 啟動電轉儀，設置參數：C=25 μF，PC=200 Ω，V=1.8 kV (此為BioRad 電轉儀推薦參數，也可按所用電轉儀推薦的參數操作），將電擊杯快速放入電轉槽中，電擊完成快速插入冰中。

5. 2分鐘后從冰中取出電擊杯，放室溫，加入1ml不含抗生素的無菌恢復培養基（室溫），用1ml 槍吹吸電擊杯底部數次混勻后，轉移到50 ml離心管（BD Falcon 50 ml錐形離心管等），向離心管中補加恢復培養基（室溫）至10 ml。37℃，225 rpm復蘇60分鐘。

6. 5000 rpm離心一分鐘收菌，重懸后取100-200 μl涂布到含相應抗生素的LB（務必使用高鹽培養基平板，不可用2YT，SOB，SOC等低鹽培養基）平板上（因菌量較大，若全部涂板請選用直徑15cm培養皿2-5個）。將平板倒置放于37℃培養箱中培養36-48小時（培養24小時后可看到很小的克?。?。

LB培養基1L(PH:7.0):                

Yeast Extract     5g                      

NaCl           10g

Tryptone        10g

注意事項

1. 因ClearColi K12細胞壁外層的脂多糖（LPS）被修飾，細胞易死亡，不易保存，平板菌在4度存放時間應不超過1周。且適合在高鹽培養基中生長。

2. ClearColi K12電擊感受態效率很低，不適用于構建質粒使用，一般用來擴繁質粒，提取高質量的無內毒素的質粒；若構建質粒，請選用DH5a、*0等轉化效率較高的感受態細胞。

3. ClearColi K12菌株生長緩慢，平板在37度培養時間在36-48小時之間。

4. 加入DNA時體積不應大于感受態體積的1/10。

5. 電轉感受態細胞加入電擊杯應避免產生氣泡，氣泡會增加弧光放電風險。

6. 當DNA不純或存在鹽，乙醇，蛋白及緩沖液等污染時，轉化效率急劇下降。

7. 電擊杯里的離子可增加溶液的電導，增大在含有細胞和DNA的溶液中產生電流和弧光放電的風險。

8. 若轉化大質?；蛳氆@得較高轉化效率，推薦使用高純質粒提取試劑盒提取質粒。質粒增大一倍，轉化效率下降一個數量級。

9. 對于連接產物轉化，盡量轉化前乙醇沉淀DNA后用適量TE緩沖液 (10 mM Tris HCl, pH7.5; 1 mM EDTA)重懸產物，保證DNA濃度不超過100 ng/μl。過高濃度連接產物或過大體積連接產物會降低轉化效率，增加弧光放電的風險。

10. ClearColi K12菌株的細胞壁被修飾過，細胞比較脆弱，混入質粒時應輕柔操作，吸取感受態細胞時避免用力過猛，以免剪切力過大損傷細胞膜，降低轉化效率。轉化高濃度的質?；蜻B接產物可相應減少用于涂板的菌量。

11. 電轉感受態細胞盡量保存在-80℃以下，高于-80℃超期儲存會導致轉化效率會下降。